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국화[Dendranthema grandiflora (Ramat.) Kitamura]는 세계 3대 주요 화훼작물이고 한국과 중국에서는 가장 중요한 절화 중 하나로 간주되고 있으며, 삽목이나 분주로 번식하고 있다. 특히 스프레이 국화는 풍부한 색과 화형을 보이는 수많은 품종들 때문에 미국과 유럽에서는 2번째로 큰 절화시장을 형성하고 있다(Chen, 2005; Li 등, 2009).
다른 작물과 마찬가지로 국화 역시 농업적으로 중요하면서도 상업성이 있는 형질들을 도입하기 위하여 일반적인 교배 또는 인위적인 돌연변이 유기를 통해 육종하고 있지만 도입할 수 있는 유용 형질은 한정적이다(Shinoyama 등, 2012). 최근에 분자생물학의 발전에 따라 교배나 돌연변이 육종을 통해서는 불가능한 형질도 도입이 가능해 졌는데(Shinoyama 등, 2006), 1975년에 처음 국화의 아그로박테리움에 대한 감수성이 보고된 이래로(Miller, 1975) 많은 연구자들이 아그로박테리움을 이용한 형질전환을 통해 유용한 농업형질을 국화에 도입하고자 하는 시도를 해오고 있다. 지금까지 국화에서 도입이 시도된 형질은 다양한데 화훼작물에서 가장 중요한 화형이나 화색 형질, 전체적인 형태조절 관련 형질이 있으며 재배에 필요한 형질로 내충성, 바이러스 저항성, 개화시기조절, 곰팡이 저항성, 스트레스 저항성유전자의 도입이 보고되었으며 최근에 상업화 및 환경위해성평가를 위해 국화의 웅성불임관련 유전자의 도입도 보고되었다(Teixeira da Silva 등, 2013; Kim 등, 2010).
스프레이 국화의 경우 국내에서 다수의 품종이 개발되고 있으나 아직까지도 네덜란드 육종회사에서 개발된 다양한 화색과 화형을 가진 품종에 비해 국내 소비자의 기호를 충족시킬 절대적인 품종 육성이 미진한 실정이다(Hwang 등, 2013). 스탠다드 국화에 비해 스프레이 국화는 다양한 품종이 있는 것이 장점이지만 주력으로 재배되는 품종이 없어 각 품종이 절화시장에서 차지하는 부분이 미미하다. 형질전환에 있어서 지금까지는 대체적으로 스탠다드 품종에서 많은 시도가 있었지만 스탠다드 품종은 전체적인 화형이나 초장, 엽형에 영향을 주지 않는 방향으로 형질전환을 해야 하므로 목적하는 유전자 선정이 매우 국한되는 단점이 있다. 그에 반해 스프레이 국화는 시장성은 스탠다드에 비해 떨어지나 매우 다양한 품종 및 형태를 가지고 있어서 상대적으로 형질전환에 사용할 수 있는 유전자의 선택 폭이 넓을 것으로 보인다. 따라서 본 논문에서는 국내에서 개발한 다양한 스프레이 품종 국화들을 대상으로 재분화 정도 및 아그로박테리움의 감염 정도를 조사하여 아그로박테리움을 이용한 형질전환의 가능성을 검토해 보고 향후 다양한 품종의 스프레이 국화 형질전환체 개발을 위한 기초 자료를 제공하고자 하였다.
재료 및 방법
식물재료 수집 및 기내도입
스프레이 국화의 형질전환을 위해서 국립원예특작과학원과 충청남도 농업기술원 예산국화시험장, 전라북도 농업기술원으로부터 분양 받은 국내 육성 스프레이 품종 39종 및 기존에 형질전환에 대한 보고가 된 바 있는 스탠다드 국화인 신마(Han 등, 2007)를 포함한 총 40종의 품종에 대해 기내도입을 수행하였다. 모주로부터 정단부(3cm 정도)를 채취하여 70% 알코올에 30초, 1%의 차아염소산나트륨으로 15분 소독한 다음 멸균수로 세 번 세척하였다. 세척한 정단부는 MS 배지(Murashige and Skoog, 1962)에 활성탄이 2g・L-1 첨가된 배지에 치상하고 8주마다 동일한 새 배지로 옮겨 증식하여 사용하였다.
품종별 재분화 시험
기내 도입한 국화 40 품종의 품종별 재분화 시험을 수행하기 위해서 각각의 잎과 마디부위를 절취하여 배양하였다. 잎은 기내도입 국화의 정단부 아래 2-3번째 잎을 약 5mm의 사각형으로 절단한 다음, 1회용 페트리디쉬에 10개씩 치상하여 4반복으로 사용하였으며 마디부위의 경우 액아가 포함되지 않도록 마디를 절단하여 동일한 방법으로 배양하였다. 재분화 배지는 MS 배지에 BAP 1.0mg・L-1, IAA 0.5mg・L-1, agar 0.7%가 첨가된 배지를 사용하였으며 25 ± 2°C에서 조절되는 배양실에서 암배양하였다(Lee 등, 2012).
암상태에서 약 6주간 배양한 후 각각의 품종별로 잎 또는 마디 절편체에 형성된 신초의 수를 측정하여 품종간 및 조직간의 재분화 정도를 비교하였으며, 측정결과는 Duncan 다중검정 방법으로 통계처리하였다(Duncan, 1955).
아그로박테리움을 이용한 품종별・조직별 감염도 조사
아그로박테리움을 이용한 품종별, 조직별 감염정도를 조사하기 위해서 기내배양한 국화 식물체를 재분화배지에서 배양하였다. 잎과 마디 절편체를 각각 1회용 페트리디쉬에 12개씩 치상하여 3반복으로 배양하였다. 아그로박테리움을 이용한 접종은 binary vector pCAMBIA2301(CAMBIA, Australia, http://www.Cambia.org)가 포함된 A. tumefaciens strain LBA4404 (O.D660 = 0.5)를 이용하여 Han 등(2007)의 방법에 따라 잎과 마디 절편체에 접종한 다음, 3일간 25°C에서 암조건에서 공동배양하였다. 공동배양 후 Jefferson 등(1987)의 방법을 변형하여 GUS 염색을 수행하였는데 공동배양한 잎과 마디 절편체를 GUS 버퍼(2mM 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-β-D-glucuronide, 0.5mM Potassium Ferrocyanide, 0.5mM Potassium Ferricyanide, 0.1% Triton X-100, 20% methanol, 100mM Phospate)에 담가 37°C에서 12시간 침지하였다. 이때 내생 GUS의 활성을 억제하기 위해서 Kosugi 등(1990)의 방법을 참고하여 메탄올을 사용하였다. GUS 염색이 끝난 후 절편체를 99% 에탄올로 3-4차례 씻어 엽록소를 제거한 다음 GUS 발현을 관찰하였다. 잎과 마디를 이용한 GUS염색에서 보다 정확한 품종간 차이를 구명하기 위해서 감염정도를 수치화하여 분류하였다. 잎의 경우 5mm의 사각형 잎 조각을 기준으로 GUS가 염색된 각 면마다 1점을 부여하여 품종별로 점수를 취합하여 분류하였으며 마디의 경우 전체 마디를 3등분한 다음 마디 전체가 염색되면 3점, 2/3이상 염색이 되었으면 2점을 부여하여 품종별로 감염된 정도를 구별하였다.
결과 및 고찰
국내 육성 스프레이 품종의 기내 도입
국화 형질전환에 있어서 아그로박테리움 감수성이나 재분화율은 형질전환 효율에 영향을 미치는 중요한 요인으로 알려져 있으며(Shinoyama 등, 2012) 품종의 특성도 영향을 미친다고 알려져 있다. 지금까지 국화 형질전환은 대부분 스탠다드 국화인 수방력(Han 등, 2007) 이나 신마(Lee 등, 2013; An 등, 2014; Song 등, 2014)에서 보고되었으며, 스프레이 국화에 대한 보고는 많지 않은 실정이다. 본 연구는 국내에서 육종을 통해 육성된 우수 스프레이 품종을 대상으로 형질전환을 하는데 반드시 확립되어야 할 조건인 재분화율과 아그로박테리움에 대한 감수성을 조사하기 위하여 총 39종의 스프레이 국화(Table 1)를 대상으로 기내 도입을 실시하였으며 이들로부터 잎과 마디 절편체를 채취하여 재분화 및 형질전환 시험을 수행하였다.
Table 1. The cultivars of chrysanthemum [Dendranthema grandiflora (Ramat.) Kitamura] used in this experiment. Thirty-nine of spray-type chrysanthemum were collected from National Institute of Horticultural & Herbal Science, Yesan Chrysanthemum Experiment Station and Jeollabuk-do Agricultural Research & Extension Service. One standard type chrysanthemum, ‘Jinba’, was used to compare transformation efficiency. |
No. | Abb. | Cultivar | Institute | No. | Abb. | Cultivar | Institute |
1 | BMB | Black Marble | National Institute of Horticultural & Herbal Science | 21 | PPP | Pink Pangpang | National Institute of Horticultural & Herbal Science |
2 | BRM | Borami | Yesan chrysanthemum Experiment Station | 22 | PV | Pink Velvet | National Institute of Horticultural & Herbal Science |
3 | CB | Cherry Blossom | National Institute of Horticultural & Herbal Science | 23 | SC | Sweet Carpet | National Institute of Horticultural & Herbal Science |
4 | FA | Forest Aroma | National Institute of Horticultural & Herbal Science | 24 | SL | Seolak | National Institute of Horticultural & Herbal Science |
5 | GF | Golden Festival | National Institute of Horticultural & Herbal Science | 25 | SP | Secret Pink | National Institute of Horticultural & Herbal Science |
6 | GM | Gama | National Institute of Horticultural & Herbal Science | 26 | SPP | Sunny Pangpang | National Institute of Horticultural & Herbal Science |
7 | GP | Graden Party | National Institute of Horticultural & Herbal Science | 27 | VS | Vivid Scarlet | National Institute of H orticultural & Herbal Science |
8 | HPR | Hwiparam | Yesan chrysanthemum Experiment Station | 28 | WPP | Whitney Pangpang | National Institute of Horticultural & Herbal Science |
9 | IW | Ilweol | National Institute of Horticultural & Herbal Science | 29 | WW | White Wing | National Institute of Horticultural & Herbal Science |
10 | JB | Jinba | Japan | 30 | YDY | Yes Day | Yesan chrysanthemum Experiment Station |
11 | MF | Moon Festival | National Institute of Horticultural & Herbal Science | 31 | YE | Yellow Elegance | National Institute of Horticultural & Herbal Science |
12 | MJG | Mujigae | Yesan chrysanthemum Experiment Station | 32 | YH | Yes Happy | Yesan chrysanthemum Experiment Station |
13 | ML | Moon Light | Jeollabuk-do Agricultural research & Extension service | 33 | YMN | Yes Morning | Yesan chrysanthemum Experiment Station |
14 | OM | Orange Memory | National Institute of Horticultural & Herbal Science | 34 | YNW | Yes Now | Yesan chrysanthemum Experiment Station |
15 | OMB | Orange Marble | National Institute of Horticultural & Herbal Science | 35 | YPP | Yellow Pangpang | National Institute of Horticultural & Herbal Science |
16 | PA | Pure Angel | National Institute of Horticultural & Herbal Science | 36 | YST | Yes Star | Yesan chrysanthemum Experiment Station |
17 | PD | Prima Donna | National Institute of Horticultural & Herbal Science | 37 | YSW | Yes Swan | Yesan chrysanthemum Experiment Station |
18 | PDA | Plaisir D’Amour | National Institute of Horticultural & Herbal Science | 38 | YTG | Yes Together | Yesan chrysanthemum Experiment Station |
19 | PK | Peak | National Institute of Horticultural & Herbal Science | 39 | YTM | Yes Time | Yesan chrysanthemum Experiment Station |
20 | PP | Pink Pride | National Institute of Horticultural & Herbal Science | 40 | 399 | 399 | National Institute of Horticultural & Herbal Science |
형질전환에 적합한 스프레이 국화 선발을 위한 품종간 재분화율 비교
식물체의 재분화율은 형질전환 효율과 밀접한 관계를 가지고 있다. 품종별 재분화 시험을 위해 IAA와 BAP를 사용한 Lee 등(2012)의 한가지 조건을 사용하였는데 두 생장조절제의 조합이 다양한 국화의 재분화에 매우 효과적인 것으로 보고된 바 있다(Aida 등, 1992; De Jong 등, 1995; Fukai 등, 1995; Ledger 등, 1991; Urban 등, 1994). 실제로 스프레이 및 스탠다드 국화 33개의 품종을 대상으로 품종간 재분화율을 조사한 Han 등(2009) 보고에서도 33개의 품종 중 7개 품종만이 IAA와 BAP 호르몬에 전혀 반응하지 않았다고 하였다. 본 시험은 동일조건에서 형질전환에 적합한 스프레이 품종을 선발한다는 목적을 가지고 수행되었기 때문에 기존에 다양한 국화 품종에서 효과가 보고된 IAA 0.5mg・L-1와 BAP 1.0mg・L-1 조합을 품종간 재분화 차이를 구분하는 기준으로 정하였다. 국화에서 형질전환에 사용하는 식물의 조직으로는 꽃잎을 사용한 보고(Kim 등, 2010)도 있지만 잎이나 마디를 사용한 보고가 다수(Teixeira da Silva, 2005)여서 본 실험에서는 기내에서 배양한 잎과 마디를 이용하여 품종간 재분화율을 조사하였다. 스프레이 품종을 이용한 형질전환은 물랑루즈(Kim 등, 2010)와 핑크팡팡, 핑크프라이드 품종(Lee 등, 2012)을 이용한 보고가 있지만 대체적으로 스탠다드 품종에 관한 보고가 다수이다. 그래서 스프레이 국화들간 재분화 효율을 비교하기 위한 조사 품종에 스탠다드 품종인 신마(JB)를 넣어 대조구로 사용하였다.
잎을 이용한 재분화 시험결과 BRM, VS, WW품종이 가장 재분화율이 높았으며, 다음으로 JB는 YTM, PK, SPP품종과 유사한 수준의 높은 재분화율을 보였다(Table 2). 비교적 높은 재분화율을 보인 스프레이 품종 중에서 PK, OM품종은 다수의 신초가 유도되긴 했지만 3주 이후부터는 신초가 유리화되는 현상이 나타나 실제 형질전환에 이용하기에는 어려움이 있을 것으로 보였다(결과 미제시). 399품종 등을 비롯한 10개 품종의 잎 조직에서는 BAP와 IAA를 이용한 재분화 배지에 전혀 반응을 하지 않았다. 마디를 이용한 재분화 시험에서는 PA품종이 월등히 높은 재분화율을 나타내었고 WW품종이 뒤를 이어 재분화율이 높은 것으로 나타났다(Table 3). 신마의 경우 마디를 이용할 경우 잎 절편체에 비해 재분화율이 훨씬 떨어지는 것으로 나타났는데, 이로 보아 신마는 기존의 보고와 같이 잎을 사용한 형질전환 방법이 더 유용할 것으로 생각되었다. 잎과 마디 조직을 이용한 재분화 시험에서 WW품종은 잎과 마디 두 조직 모두를 사용해서 형질전환이 가능한 품종으로 확인되었다. 6주간 암배양 후 일주일간 광상태에서 배양한 다음 신초의 재분화 결과는 그림 1과 같았다(Fig. 1). 신초의 재분화율은 품종과 사용하는 부위에 따라 달라지는데 일반적으로 잎이 마디보다는 높다고 알려져있다(Han 등, 2009). 그러나 본 실험 결과 품종에 따라서 잎보다 마디가 재분화가 높은 품종도 있는 것으로 확인되었는데 식물체의 재분화율은 각 식물자체가 가지고 있는 유전적 배경과 특성에 따라 달라지는 것으로(Takatsu 등, 1998) 생각되며, 어떤 품종을 가지고 형질전환을 하느냐에 따라 적합한 조직을 선택할 필요가 있을 것으로 보인다.
Table 2. The shoot regeneration efficiency of various chry-santhemum cultivars using leaves. Induction of adventitious shoots from leaf explants of 40 different cultivars regenerated from medium containing BAP and IAA at 25°C in the dark for 6 weeks. |
Cultivar | No. of regenerated shoots | Cultivar | No. of regenerated shoots |
BMB | 0.0 hz | PPP | 7.3 g-h |
BRM | 31.3 a-c | PV | 0.0 h |
CB | 7.3 f-h | SC | 0.5 h |
FA | 0.0 h | SL | 0.0 h |
GF | 7.8 f-h | SP | 5.5 gh |
GM | 2.5 h | SPP | 24.3 c-e |
GP | 0.0 h | VS | 38.8 ab |
HPR | 0.0 h | WPP | 9.8 e-h |
IW | 5.8 f-h | WW | 43.5 a |
JB | 20.8 cd-g | YDY | 6.3 f-h |
MF | 0.0 h | YE | 1.0 h |
MJG | 4.0 h | YH | 2.8 h |
ML | 0.0 h | YMN | 14.5 d-h |
OM | 14.8 d-h | YNW | 0.0 h |
OMB | 6.7 f-h | YPP | 0.3 h |
PA | 12.3 e-h | YST | 0.8 h |
PD | 7.3 f-h | YSW | 0.5 h |
PDA | 5.0 h | YTG | 8.5 g-h |
PK | 20.8 c-ef | YTM | 26.8 b-d |
PP | 11.0 e-h | 399 | 0.0 h |
zDifferent letters in same line represent significant differences by Duncan’s multiple range test, p ≤ 0.05. |
Table 3. The shoot regeneration efficiency of various chry-santhemum cultivars using internodes. |
Cultivar | No. of regenerated shoots | Cultivar | No. of regenerated shoots |
BMB | 4.0 jkz | PPP | 13.5 e-k |
BRM | 19.8 d-h | PV | 18.8 d-i |
CB | 21.3 d-h | SC | 7.3 h-k |
FA | 9.8 f-k | SL | 0.5 k |
GF | 16.5 e-j | SP | 13.8 e-k |
GM | 2.5 jk | SPP | 49.8 b |
GP | 1.8 k | VS | 22.8 d-g |
HPR | 0.0 h | WPP | 13.0 e-k |
IW | 12.8 f-k | WW | 43.8 bc |
JB | 18.3 e-i | YDY | 23.5 d-f |
MF | 9.0 f-k | YE | 8.0 g-k |
MJG | 9.5 f-k | YH | 12.0 f-k |
ML | 16.5 e-j | YMN | 33.0 d |
OM | 28.0 de | YNW | 0 e-h |
OMB | 15.0 e-k | YPP | 0 k |
PA | 72.0 a | YST | 11.8 f-k |
PD | 11.3 f-k | YSW | 0.8 k |
PDA | 9.8 j-i | YTG | 14.5 e-k |
PK | 22.0 d-h | YTM | 16.7 e-j |
PP | 7.8 g-k | 399 | 10.8 f-k |
zDifferent letters in same line represent significant differences by Duncan’s multiple range test, p ≤ 0.05. |

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Fig. 1. Shoot regeneration from 40 chrysanthemum cultivars. Regenerated shoots following dark culture for 6 weeks were exposed to light for about a week and each petri-dish was photographed. Each cultivar showed regenerated shoots from leaf (left) and internodes (right). |
품종별・조직별 아그로박테리움 감염도 조사
국화의 성공적인 형질전환은 품종에 따라서 달라지는 아그로박테리움 균주의 특이성, 아그로박테리움 감염에 대한 감수성, 기내 식물체의 재분화 효율성에 영향을 받는다(Teixeira da Silva 등, 2004). 국화 형질전환에서 아그로박테리움 균주로 LBA4404가 가장 많이 사용되고 있어서(Teixeira da Silva, 2005), 본 시험에서는 품종간 아그로박테리움 감염도를 조사하기 위한 transient assay의 균주로 LBA4404를 사용하였다. Transient assay는 재분화에 사용한 동일한 잎과 마디를 대상으로 하였으며 gus를 포함한 벡터로는 pCAMBIA2301을 사용하였다.

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Fig. 2. Histochemical GUS staining with leaf disks. The same stage leaves as used in regeneration were infected with Agrobacterium LBA4404 strain containing pCAMBIA 2301 and co-cultured for three days in the dark at 25°C. The inoculated leaf disks were stained in GUS buffer and incubated at 37°C for 12 hours. We investigated blue spots in leaf disks after several rounds of washing with absolute alcohol. |
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Fig. 3. Histochemical GUS staining with internodes. All procedures were followed as Fig. 2 except for the use of internodes. |
GUS 염색 후 관찰하였을 때 FA, MGJ, OMB, PA, PP, VS, WPP, WW, YMN, YNW 등 품종이 높은 GUS활성을 나타내었다(Fig. 2). 마디를 이용한 경우에는 CB, FA, GP, MJG, OMB, PA, PK, SPP, WPP, YE, YMN, YNW, YTM 등 품종이 눈으로 식별 가능할 정도의 활성을 보였다(Fig. 3). 보다 정확한 품종간 차이를 구명하기 위해서 품종별 감염정도를 부위별로 수치를 부여하여 3그룹으로 분류하였다(Table 3). 품종에 따른 잎의 감염 정도는 WPP, YNW, VS, PP, WW, FA, PA, YMN 품종이 가장 높은 감염도를 보였으며(A그룹), 스탠다드 국화인 신마는 PPP 등의 품종과 유사한 수준의 발현을 보였다(Fig. 2 and Table 3). 잎을 이용한 재분화 시험결과와 연관하여 분석하였을 때 재분화율이 높았던 품종 중 VS나 WW 품종은 아그로박테리움 감염도도 높은 편이어서 차후 잎을 이용한 스프레이 품종 형질전환 시 매우 유용한 품종으로 확인되었다. 마디를 이용한 경우 WPP, PA, PK, YNW 품종이 가장 감염도가 높게 나타났으며, PA 품종의 경우 마디를 이용한 재분화에서 월등한 재분화율을 보여 마디를 이용한 국화 형질전환에 가장 적합한 품종으로 확인되었다. Transient assay후 감염된 부위를 수치화 하여 분류하는 방법은 품종간 아그로박테리움에 대한 감염도가 높은 품종을 선별하는데 비교적 적합한 방법으로 판단된다.
국내에서 개발된 스프레이 국화 품종을 대상으로 재분화와 아그로박테리움 감염도를 동일한 시험방법으로 조사한 결과, 잎 절편체의 형질전환에서는 VS, WW 품종이 가장 적합한 품종으로 확인되었으며, 마디를 이용한 형질전환에서는 PA 품종이 가장 적합한 품종으로 확인되었다. 특히 세 품종은 대조구로 사용한 신마 품종보다 재분화나 아그로박테리움 감염도가 높아서 향후 특정 유전자의 국화 내 발현을 조사하거나 국화에서 필요한 형질을 개량하기 위한 형질전환에 유용하게 사용될 수 있을 것으로 생각되었다.
Table 4. Results of agrobacterium-infection through transient assays. To compare cultivars, scores were given for each tissue. The number for leaf disks stained with all square sides was 4 and non-stained disks were considered 0. In the case of internodes, score was given grade by stinaed portion from 0 to 3. |
Group Tissue | A | B | C |
Leaf disksz | WPP, YNW, VS, PP, WW, FA, PA, YMN | PPP, MJG, SPP, MF, BMB, OMB, YE, 399, HPR, GP, SC, YTM, PD, PK, PDA, JB | PV, GM, BRM, YST, GF, SL, ML, OM, YDY, YPP, YTG, IW, CB, YSW, YH, SP |
Internodesy | WPP, PA, PK, YNW | YMN, PD, GP, YE, SC, YTM, CB, PPP, MJG, FA, JB, SP, SPP, OMB, 399, WW, YSW | PDA, PP, BMB, ML, VS, YST, HPR, GF, IW, YDY, YH, PV, YTG, SL, OM, BRM, MF, GM, YPP |
zTotal score from 2 to 37 was C, 40 to 72 was B and 81 to 109 was A. yTotal score from 0 to 30 was C, 31 to 58 was B and 67 to 88 was A. |
Acknowledgements
본 연구는 농촌진흥청 어젠다 과제(과제번호 PJ010881)연구비에 의해 이루어진 것임.
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