Horticultural Science and Technology. 31 December 2014. 745-752
https://doi.org/10.7235/hort.2014.12203

ABSTRACT


MAIN

  • 서 언

  • 본 론

  •   배추의 분자 마커 개발 및 육종에의 응용

  •   유전적 다양성

  •   웅성 불임성

  •   개화 및 추대 형성

  •   병저항성

  •   배추 유전체 연구

  • 결 론

서  언

배추는 우리나라 4대 채소작물(생산면적(ha) 기준 - 배추, 무, 고추, 마늘) 중의 하나이며, 한국 고유 발효 식품 중에 하나인 김치의 주재료로서 이용되고 있다. 영양학적 측면에서 주로 잎을 통해 비타민, 미네랄 및 식이섬유를 제공하고 있다. 2012년 국내 배추 재배면적은 약 35,513ha(전체 채소 재배면적 224,713ha 중 6.31%를 차지함)에 달하며, 생산량은 약 181.6만 톤으로 조사되었다(Statistics Korea, 2013). 배추가 주재료인 전체 김치 시장의 규모는 2012년 기준 2조 4천 254억원으로 보고되었다(Ahn and Lee, 2013). 배추는 채소로서의 이러한 경제적 가치 이외에 식용유의 공급원으로 이용되고 있으며, B. rapa ssp. oleiferous(yellow sarson, brown sarson, toria 등)는 중국, 캐나다, 인도, 그리고 북유럽 등지에서 유지 작물로 재배, 이용되고 있다. 배추 단일 작목으로 조사되지는 않았지만, 미국 USDA의 2012/13 통계에 따르면 Rapeseed(B. napus 및 B. rapa ssp. oleiferous 등 포함)에서 생산되는 유지는 전세계 식용유공급의 약 15%를 점유하는 것으로 나타났다.

현재 국내의 배추 육종 기술 체계는 교배와 선발, 즉 자가불화합성 이용 기술, 웅성불임성 이용 기술, 순계의 조기 고정, 조합 능력 검정, 잡종강세 조기 예측, 변이 창출 기술 등에 의한 육종법에 의존되어 왔다. 비록 새로 개발된 품종의 품질이 우수할 지라도 하나의 품종을 개발하기 위해 많은 노동력과 시간이 소요된다. 1990년 이후 종자산업의 육성 및 국가 경쟁력 향상을 위해 국내 육종 기술 체계의 새로운 패러다임이 요구되었고, 이에 따라 고전 육종법에 생명공학 기술(예, 형질전환 기술 및 분자 마커 개발 기술)의 접목이 이루어져 육종의 효율화와 고품질 품종 개발을 도모하고 있다. 특히, 작물 육종 시 분자 마커의 응용은 우수 형질을 가진 육종 재료들의 효율적인 선발을 가능케 하고, 순도 향상, 육종 연한 및 노동력 감소라는 큰 효과를 주고 있다. 게다가 이러한 접근법은 선발 이후 고전 육종법(교배)이 적용되기 때문에 친환경적 농업 전략에도 매우 잘 부합되는 것으로 평가 받고 있다. 국내에 분자육종 기술 체계 확립을 통한 육종의 과학화가 이뤄진다면 우수 품종 육성의 확대가 가능해 지고 생물다양성협약으로 인한 신품종 보호 등으로 인해 세계 종자시장에서의 경쟁력 우위를 지킬 수 있을 것으로 전망한다. 이 보고에서 최근 배추 육종을 위한 분자 마커의 개발 현황 및 활용에 관해 논의하고자 한다.

본  론

배추의 분자 마커 개발 및 육종에의 응용

배추에서 분자 마커의 개발과 이용은 1980년대 후반부터 시작되었으며, 이후 여러 가지 형태의 분자 마커들(RAPD, RFLP, AFLP, SSR, SNP 등)이 개발되어(Table 1) 배추과 작물의 유전적 다양성(진화 연구 및 종간 구별 등) 및 육종을 위한 선발에 이용되었다. 본문에서는 유전적 다양성, 웅성 불임성, 개화 및 추대형성, 병 저항성 관련하여 분자 마커 개발 및 육종에의 활용 현황에 대해 논한다.

유전적 다양성

Song et al.(1988a, 1988b)에 의해 개발된 RFLP 마커를 이용하여 B. rapa 및 B. napus의 유럽 종과 중국 종의 유전적 차이를 구별하여 배추과 작물에서 분자 마커의 활용 가능성을 처음 제시하였다. 또한 He et al.(2002)은 채소용 및 유지(oleiferous)형 B. rapa의 유전적 다양성을 제시하였다. Ofori et al.(2008)은 B. rapa oilseed 유전자원을 이용하여 양질의 종자유(erucic acid, glucosinolate 저함량) 생산, 품종계량을 목적으로 육종할 때 현재 사용중인 재료의 유전적 변이가 충분함을 평가하였다. Guo et al.(2014)은 SSR 마커로 B. rapa(Turnip Rape) 유전자원을 발상 중심(기원지)과 다양성 중심지로 구분하였으며, 이러한 결과는 발상지에서 현재 분포지역으로 이주를 통해 전파되었음을 시사하였다. Zhao et al.(2005)은 전 세계에서 지리적 위치를 달리하여 수집한 B. rapa 재래종, 품종 및 육종 재료를 AFLP 마커로 분석한 결과, 동아시아와 유럽 등에서는 형태형(morphotype)에 의한 차이보다 자원의 기원지에 의해 먼저 구분됨을 보고하였다. 이는 유전적 변이가 각각 자원의 기원지뿐만 아니라 오랜 동안 고립되어(독립적으로 분리) 형성된 순화와 육종을 통해 형성되었음을 시사하였다.

웅성 불임성

배추에서 웅성 불임성 계통 육성은 1대 잡종의 종자 생산에 높은 효율성을 가져다 준다. 특히, 세포질 인자에 의한 웅성 불임성(세포질 웅성 불임성, cytoplasmic male sterility; CMS)에 의한 잡종 종자 생산에 많은 노력을 기울이고 있다. CMS는 세포질 요인에 의해 미토콘드리아가 정상적인 기능을 수행하지 못함으로써 비정상적인 화분을 생성하고 자가수정 능력을 갖지 못한다. 게다가 CMS는 모계유전(maternal inheritance)으로 어느 가임계를 교배해도 100% 불임주가 나오기 때문에 CMS계의 유지가 매우 용이하다(Chase et al., 2007; Dong et al., 2013). 배추속(Brassica) 작물의 CMS 종류는 Polima, Ogura, Napus, Anand 등이 알려져 있다(Cardi and Earle, 1997; Geddy et al., 2005; Makaroff and Palmer, 1988; Verma et al., 2000). 배추속 이외에 무속(Raphanus) 작물에서도 Ogura, Kosena 등이 알려져 있다(Krishnasamy and Makaroff, 1993; Makaroff and Palmer, 1988). 서술된 종류들 이외에 Hirata et al.(2001)은 배추의 소송채와 양배추의 루비볼의 기내접목으로부터 생산된 키메라 개체와 소송채의 교잡을 통해 후대에서 CMS을 발견하기도 하였다. CMS 구별을 위한 마커로 배추과 작물(예, 갓)의 미토콘드리아 유전체 중 atpA 유전자 근방의 orf220 및 nad2 유전자 근방의 orfB로부터 개발된 것이 보고되었다(Yang et al., 2007).

개화 및 추대 형성

배추는 파종 후 일정기간의 저온이 계속되면 추대와 개화를 유도하는 생리적 특성 때문에 재배지역과 파종시기가 제한된다. 이러한 특성과 관련하여 비결구형의 배추 double haploid(DH) line을 이용하여 만추대와 연관된 RAPD 마커가 개발되었다(Ajisaka et al., 2001). 최근, 배추에서 BrFLC1 (B. rapa Flowering Locus C1)과 BrFLC2가 추대시기와 관계가 있음이 보고되었고, 그 유전자들로부터 SNPs이 확인되었다(Kakizaki et al., 2011). Yellow sarson YS-143과 Pak choi PC-175의 교배를 통해 얻은 F1에서 유래한 DH line의 Quantitative Trait Loci(QTL) 분석으로부터 BrFLC2가 춘화처리와 관련이 있다고 밝혀졌고, 개화시기 관련 마커로서의 활용 가능성을 제시하였다(Zhao et al., 2010). FLC 유전자 이외에 추대시기와 관련하여 FT 유전자에서 변이형(BrFTa) 및 QTL이 관찰되었다(Kakizaki et al., 2011).

Table 1. Categories and characteristics of some markers.

Categories

Characteristics

Locus or marker name

Marker type

Reference

Disease 

resistance

Clubroot

CRa (SC2930),

GC2360/GC1680

RAPD/RFLP/SCAR/STS

Hayashida et al., 2008

Kuginuki et al., 1999

Matsumoto et al., 1998

Matsumoto et al., 2005

Matsumoto et al., 2012

Sakamoto et al., 2008,

Ueno et al., 2012

CRb (KB59N07, B1005)

AFLP/SCAR/SSR

Piao et al., 2004

CRc

RAPD/STS

Hirai et al., 2004

Matsumoto et al., 2012

CRk

RFLP

Sakamoto et al., 2008

CRaki

SSR

Kato et al., 2012, 2013

Crr1

CAPS/InDel/SNP/SSR

Hatakeyama et al., 2013

Suwabe et al., 2003

Suwabe et al., 2006

Crr2

SNP/SSR

Suwabe et al., 2003, 2006

Crr3

RAPD

Hirai et al., 2004

Saito et al. 2006

Crr4

SSR

Suwabe et al., 2006

Downy mildew

BraDM

Isozyme/RAPD

Yu et al., 2009

BrRHP1, Brb094-Aat2_666,

Brb043-Bgl2_715

InDel/SCAR

Kim et al., 2011

K14-1030/ KBrb058m10-1,

kbrb006c05-2, KBrb058m10

SSR

Yu et al., 2011

BrPERK15A, BrPERK15B, K14-1030

RAPD

Kim et al., 2011

Yu et al., 2011

RPP13MK

Yu et al., 2010

Brh019-SNP137

SNP

Li et al., 2011

TuMV

trsSCAR

SCAR

Kim et al., 2013

TuMV-R

SSR

Chung et al., 2014

TuRB01b

GENE

Rusholme et al., 2007

TuRB07

SSR

Jin et al., 2014

TuRBCH01

GENE

Wang et al., 2009

Flowering

Genic male sterility

GMS

AFLP/RAPD/SCAR/SSR

Feng et al., 2009a, 2009b

Ying et al., 2003

Male sterility

syau_scr01, syau_scr04/syau_m13

SCAR/SSR

Feng et al., 2009b

Self-incompatibility

SLG,SRK,SCR/SP11

STS

Hiscock and McInnis, 2003

Bolting

G-Mva1, BrFLC1,2

CAPS/SNP

Yuan et al., 2008

Secondary 

metabolite

Aliphatic 

glucosinolate

Ali-QTL3.1, Ali-QTL3.2,

Ali-QTL10.1, Ali-QTL10.2

AFLP/SSR

Lou et al., 2008

BraMAM1-1

SCAR

Hirani et al., 2013

Aromatic glucosinolate

Aro-QTL4.1, Aro-QTL4.2, Aro-QTL7.1

AFLP/SSR

Lou et al., 2008

Indolic glucosinolate

Ind-QTL2.1, Ind-QTL3.1, Ind-QTL8.1

AFLP/SSR

Lou et al., 2008

Jasmonic acid pathway

BrLOX2, BrVSP2

GENE

Abe et al., 2009

Carotenoid

BrCRTIS01

GENE

Lee et al., 2014

Morphological 

trait

Incison

KNOX

cDNA-AFLP/STS

Li et al., 2013

Height

dwarf

STS

Muangprom et al., 2004

Seed trait

Seed coat color,

Leaf hair

BrTTG1

SNP/SRAP

Zhang et al., 2009

GL1, GL3

SNP/SRAP

Gruber et al., 2006

Li et al., 2013

Seed oil contents

OPB-11a

RAPD

Tanhuanpää et al., 1995

병저항성

배추에서 발병하는 노균병 및 뿌리혹병은 묘상 및 포장에서 큰 피해를 입히고 있는 대표적인 병해로 포자로 월동하며 배추 및 기타 식물(노균병; 상추, 시금치, 오이, 무, 파, 양파 등, 뿌리혹병; 배추, 유채, 냉이 등)에도 감염을 일으킨다. 이에 대한 저항성 품종을 개발하기 위해, 2000년대부터 꾸준히 노균병 및 뿌리혹병에 대해 저항성 품종 및 관련 분자 마커 개발에 많은 노력을 하고 있다. Farinhó et al.(2004)은 브로콜리(B. oleracea ssp. italica)에서 Pp523 유전자의 발현으로 노균병 저항성이 증가되는 것을 확인하였다. Rapid- cycling B. oleracea DH line GK97362와 OL87125로부터 유래한 S4 line의 교배로 얻은 F2 집단에서 Pp523 유전자좌, 301개의 AFLPs, 55개의 RAPDs, 46개의 ISSR, 3개의 SSRs, 4개의 기타 PCR 마커들이 개발되어 4개의 연관군이 확인되었다. Lee et al.(2006)은 배추의 노균병 저항성 품종과 감수성 품종을 교배한 후 F2 평가에서 3:1의 분리비를 확인함으로써, 노균병 저항성 연관 유전자 좌위가 단일 우성 유전자임을 밝혔다. 이 연구에서 BSA(bulked segregant analysis)와 fingerprint 기술을 결합하여 노균병 저항성 유전자좌에 연결된 3개의 마커가 개발되었다. 이외에 배추분자마커사업단 (2007-2012)의 연구를 통해 신규의 배추 노균병 저항성 유전자좌 BrRHP1과 연관 RAPD 및 SSR 마커가 발견, 개발되어 특허 출원되었다(Kim et al., 2011). 배추 뿌리혹병은 Plasmodiophora brassicae의 감염으로 발병하며, 뿌리혹병 감염 시 뿌리 조직의 유관속부의 이상 비대 및 잔뿌리 발육 저해로 정상적인 양분과 수분 흡수를 방해하여 식물에 피해를 준다(Voorrips et al., 1995). 뿌리혹병균은 병원성에 따라 다양한 생리적 분화형(race)이 혼합된 상태로 존재하여 저항성 품종의 개발에도 불구하고 지역이나, 재배시기에 따라 이병성, 중도저항성, 저항성 등 일관성이 없는 저항성을 보이고 있다(Kim et al., 2003). 배추 뿌리혹병 저항성 유전자들로 Crr1, Crr2, Crr3, Crr4, CRa, CRb, CRc, CRk가 보고되었고, 각 유전자에 따라 저항성을 보이는 race가 다르다. Crr1 과 연관된 SSR 마커(Suwabe et al., 2006), Crr2와 연관된 SSR 마커(Suwabe et al., 2006), Crr3와 연관된 STS 마커(Hirai et al., 2004), Crr4와 연관된 RFLP 마커(Suwabe et al., 2006), CRa 유전자와 연관된 RFLP, STS 마커(Matsumoto et al., 1998; Sakamoto et al., 2008), CRb와 연관된 SCAR 마커(Piao et al., 2004), CRc와 연관된 AFLP 마커(Sakamoto et al., 2008), CRk와 연관된 STS 마커(Sakamoto et al., 2008) 등이 보고되어 있다.

배추 유전체 연구

배추는 경제적 작물로서의 가치 이외에 배수성(polyploidization) 연구에 있어 중요한 모델 작물(Wang et al., 2011)의 하나로 인식되고 왔고, 최근에는 배추 유전체 전체 염기서열 정보가 발표되었다(The Brassica rapa Genome Sequencing Project Consortium, 2011). 배추는 염색체 재배열 과정(fusion 및 fission)과 함께 genome triplication이 되었고, 약 41,174개의 유전자들을 포함하고 있는 것으로 예측되고 있다. 특히, genome triplication 과정에서 발생된 gene loss와 같은 변이화는 배추 표현형적 다양성을 결정하는데 중요한 역할을 하는 것으로 예상하고 있다(The Brassica rapa Genome Sequencing Project Consortium, 2011).

작물 육종에서 표준 유전체 정보는 농업적 형질과 관련된 변이들 및 핵심 유전자들의 탐색을 유용하게 하고, 나아가서는 육종 기술 기반의 규모 확장 및 작물의 형질 개선을 가능케 한다. 배추에서도 표준 유전체 정보를 기반으로 배추 분자육종을 위한 대량의 SNP 및 SSR 마커 등이 개발되어 고밀도의 표준 유전자 지도가 가능케 되었고(Li et al., 2010), 농업적 형질 관련 QTL 탐색 등의 연구가 활발히 진행되고 있다. 최근 보고된 배추 고밀도 표준 유전자 지도는 1,426개의 분자 마커를 포함하고 있으며, B. rapa와 B. jucea A genome의 비교 유전체 지도를 보고하였다(Ramchiary et al., 2011). Erucic acid, Glucosinolate, Flowering time, Yield component 관련 QTL 및 관련 마커들이 탐색되었다(Li et al., 2010, 2013). 또한 유전체 분석이 용이해지면서 배추속 작물 사이의 유용 형질의 탐색을 가능케 하고 있다. B. rapa와 B. jucea, B. nigra, Raphanus sativus 사이의 비교유전체 연구 등이 수행되어, 유전체 block 간의 비교 유전자 지도, 수량 관련 QTL, 개화 관련 유전자좌 등이 탐색되었다(Li et al., 2010; Ramchiary et al., 2007; Yang et al., 2002).

최근 high-quality reference genome 정보와 함께 차세대 염기서열 분석 기법(next-generation sequencing, NGS)의 등장은 빠른 시간 내에 대량의 농업적 형질 관련 변이 탐색을 가능케 해주고 있다. 특히, NGS를 이용한 whole-genome resequencing은 sequencing-based genotyping 및 genome-wide association studies(GWAS)의 개발을 가능케 하고 있다. 가령 최근 517개의 벼 품종을 resequencing을 한 후, 약 3.6 million개의 SNP를 확인하고 14개의 agronomic traits에 대한 GWAS를 수행하였다(Huang et al., 2010). 이러한 사례는 genotype과 phenotype 사이의 지식의 간격을 좁힐 수 있고, 작물 genomics-assisted selection을 통한 pyramid breeding에 응용될 수 있음을 잘 보여준다(Chia and Ware 2011; Huang et al., 2012).

결  론

분자 마커 기반의 genomics-assisted selection은 우수한 형질을 가진 개체를 선발하는데 높은 효율성을 주고, 순도 향상, 육종 연한 단축, 노동력 감소 등을 통해 작물의 형질 개선 및 우수 품종 개발에 큰 효과를 가져다 줄 수 있다. 특히, 병충 저항성, 기후적 조건에 대한 저항성과 같은 형질을 가진 품종 개발에 큰 기대효과를 가질 수 있을 것으로 전망한다. 배추의 경우 유전체 정보가 밝혀진 이래 이미 각국에서 다양한 종류의 분자 마커 개발을 통한 품종육성을 수행하고 있다. 따라서 본 보고에서 밝힌 최근의 배추 분자 마커의 활용 현황은 앞으로 배추를 포함한 배추과 작물의 유전자원 확보 및 보존의 금후 전략 수립은 물론, 품종육성을 위한 분자 마커를 이용한 분자육종의 방향 및 전략 수립에 도움이 될 것이며, 우수 품종육성을 통한 전략적 종자산업 육성을 위한 기반이 될 것이다.

Acknowledgements

본 연구는 한국과학기술정보연구원이 수행하고 있는 ReSEAT 프로그램의 지원과 농촌진흥청 차세대바이오그린21사업단(식물분자육종사업단 No. PJ007992)의 지원 및 2011년도 충남대학교 학술연구비 지원에 의해 수행되었습니다.

References

1
Ahn, S.D. and S.S. Lee. 2013. NHERI report for 2013; 2013 Trend of domestic Kimchi industry, Investigation of consumer Gimjang plan. NongHyup Economic Res. Inst. Rpt. 230:1-2
2
Abe, H., T. Shimoda, J. Ohnishi, S. Kugimiya, M. Narusaka, S. Seo, Y. Narusaka, S. Tsuda, and M. Kobayashi. 2009. Jasmonate- dependent plant defense restricts thrips performance and preference. BMC Plant Biol. 9:97.
3
Ajisaka, H., Y. Kuginuki, S. Yui, S. Enomoto, and M. Hirai. 2001. Identification and mapping of a quantitative trait locus controlling extreme late bolting in Chinese cabbage (Brassica rapa L. ssp. pekinensis syn. campestris L.) using bulked segregant analysis. Euphytica 118:75-81.
4
Cardi, T. and E.D. Earle. 1997. Production of new CMS Brassica oleracea by transfer of ‘Anand’ cytoplasm from B. rapa through protoplast fusion. Theor. Appl. Genet. 94:204-212.
5
Chase, C.D. 2007. Cytoplasmic male sterility: A window to the world of plant mitochondrial-nuclear interactions. Trends Genet. 23:81-90.
6
Chia, J.M. and D. Ware. 2011. Sequencing for the cream of the crop. Nat. Biotechnol. 29:138-139.
7
Chung, H., Y.M. Jeong, J.H. Mun, S.S. Lee, W.H. Chung, and H.J. Yu. 2014. Construction of a genetic map based on high- throughput SNP genotyping and genetic mapping of a TuMV resistance locus in Brassica rapa. Mol. Genet. Genomics 289:149-160.
8
Dong, X., W.K. Kim, Y.P. Lim, Y.K. Kim, and Y. Hur. 2013. Ogura-CMS in Chinese cabbage (Brassica rapa ssp. pekinensis) causes delayed expression of many nuclear genes. Plant Sci. 199-200:7-17.
9
Farinhó, M., P. Coelho, J. Carlier, D. Svetleva, A. Monteiro, and J. Leitão. 2004. Mapping of a locus for adult plant resistance to downy mildew in broccoli (Brassica oleracea convar. italica). Theor. Appl. Genet. 109:1392-1398.
10
Feng, H., P. Wei, C.Y. Li, S.R. Choi, Y.P. Lim, and Z.Y. Piao 2009a. Identification of SSR markers linked to a genic multiple-allele male sterile gene. Acta Hortic. Sinica 36: 103-108.
11
Feng, H., P. Wei, Z.Y. Piao, Z.Y. Liu, C.Y. Li, Y.G. Wang, R.Q. Ji, S.J. Ji, T. Zou, S.R. Choi, and Y.P. Lim. 2009b. SSR and SCAR mapping of a multiple-allele male-sterile gene in Chinese cabbage (Brassica rapa L.). Theor. Appl. Genet. 119:333-339.
12
Geddy, R., L. Mahe, and G.G. Brown. 2005. Cell-specific regulation of a Brassica napus CMS-associated gene by a nuclear restorer with related effects on a floral homeotic gene promoter. Plant J. 41:333-345.
13
Guo, Y., S. Chen, Z. Li, and W.A. Cowling. 2014. Center of origin and centers of diversity in an ancient crop, Brassica rapa (turnip rape). J. Heredity 105:555-565.
14
Gruber, M.Y., S. Wang, S. Ethier, J. Holowachuk, P.C. Bonham- Smith, J. Soroka, and A. Lloyd. 2006. “HAIRY CANOLA”- Arabidopsis GL3 induces a dense covering of trichomes on Brassica napus seedlings. Plant Mol. Biol. 60:679-698.
15
Hatakeyama, K., K. Suwabe, R.N. Tomita, T. Kato, T. Nunome, H. Fukuoka, and S. Matsumoto. 2013. Identification and Characterization of Crr1a, a Gene for Resistance to Clubroot Disease (Plasmodiophora brassicae Woronin) in Brassica rapa L. PLOS ONE. 8(Special section P1).
16
Hayashida, N., Y. Takabatake, N. Nakazawa, D. Arugal, H. Nakanishi, G. Taguchi, K. Sakamoto, and E. Matsumoto. 2008. Construction of a practical SCAR marker linked to clubroot resistance in Chinese cabbage, with intensive analysis of HC352b genes. J. Jpn. Soc. Hort. Sci. 77:150-154.
17
He, Y., J. Tu, T. Fu, D. Li, and B. Chen. 2002. Genetic diversity of germplasm resources of Brassica campestris L. in China by RAPD markers. Zuo Wu Xue Bao 28:607-703.
18
Hirai, M., T. Harada, N. Kubo, M. Tsukada, K. Suwabe, and S. Matsumoto. 2004. A novel locus for clubroot resistance in and its linkage markers. Theor. Appl. Genet. 108:639-643.
19
Hirani, A.H., C.D. Zelmer, P.B.E. McVetty, F. Daayf, and G. Li. 2013. Homoeologous GSL-ELONG gene replacement for manipulation of aliphatic glucosinolates in Brassica rapa L. by marker assisted selection. Frontiers Plant Sci. 4(55):1-12.
20
Hirata, Y., T. Motegi, Y. Takeda, and K. Morikawa. 2001. Induction of cytoplasmic male sterility in the seed progeny derived from artificially-synthesized interspecific chimera in Brassica. Euphytica 117:143-149.
21
Hiscock, S.J. and S.M. McInnis. 2003. Pollen recognition and rejection during the sporophytic self-incompatibility response: Brassica and beyond. Trends Plant Sci. 8:606-613.
22
Huang, X., T. Lu, and B. Han. 2012. Resequencing rice genomes: An emerging new era of rice genomics. Trends Genet. 29: 225-232.
23
Huang, X., X. Wei, T. Sang, Q. Zhao, Q. Feng, Y. Zhao, C. Li, C. Zhu, T. Lu, Z. Zhang, M. Li, D. Fan, Y. Guo, A. Wang, L. Wang, L. Deng, W. Li, Y. Lu, Q. Weng, K. Liu, T. Huang, T. Zhou, Y. Jing, W. Li, Z. Lin, E.S. Buckler, Q. Qian, Q.F. Zhang, J. Li, and B. Han. 2010. Genome-wide association studies of 14 agronomic traits in rice landraces. Nat. Genet. 42:961-967.
24
Jin, M., S.S. Lee, L. Ke, J.S. Kim, M.S. Seo, S.H. Sohn, B.S. Park, and G. Bonnema. 2014. Identification and mapping of a novel dominant resistance gene, TuRB07 to Turnip mosaic virus in Brassica rapa. Theor. Appl. Genet. 127:509-519.
25
Kakizaki, T., T. Kato, N. Fukino, M. Ishida, K. Hatakeyama, and S. Matsumoto. 2011. Identification of quantitative trait loci controlling late bolting in Chinese cabbage (Brassica rapa L.) parental line Nou 6 gou. Breeding Sci. 61:151-159.
26
Kato, T., K. Hatakeyama, N. Fukino, and S. Matsumoto. 2012. Identificaiton of a clubroot resistance locus conferring resistance to a Plasmodiophora brassicae classified into pathotype group 3 in Chinese cabbage (Brassica rapa L.). Breeding Sci. 62: 282-287.
27
Kato, T., K. Hatakeyama, N. Fukino, and S. Matsumoto. 2013. Fine mapping of the clubroot resistance gene CRb and development of a useful selectable marker in Brassica rapa. Breeding Sci. 63:116-124.
28
Kim, C.H., W.D. Cho, and S.B. Lee. 2003. Review of researches on clubroot disease of Chinese cabbage in Korea and future tasks for its management. Res. Plant. Dis. 9:57-63.
29
Kim, J.H., W.H. Kang, H.B. Yang, S.H. Park, C.S. Jang, H.J. Yu, and B.C. Kang. 2013. Identification of a broad-spectrum recessive gene in Brassica rapa and molecular analysis of the eIF4E gene family to develop molecular markers. Mol. Breeding 32:385-398.
30
Kim, S.G., Y.H. Song, J.Y. Lee, S.R. Choi, V. Dhandapani, C.S. Jang, Y.P. Lim, and T.H. Han. 2011. Identification of the BrRHP1 locus that confers resistance to downy mildew in Chinese cabbage (Brassica rapa ssp. pekinensis) and development of linked molecular markers. Theor. Appl. Genet. 123:1183-1192.
31
Krishnasamy, S. and C.A. Makaroff. 1993. Characterization of the radish mitochondrial orfB locus: Possible relationship with male sterility in Ogura radish. Curr. Genet. 24:156-163.
32
Kuginuki, Y., H. Yoshikawa, and M. Hirai. 1999. Variation in virulence of Plasmodiophora brassicae in Japan tested with clubroot resistant cultivars of Chinese cabbage (Brassica rapa L. ssp. pekinensis). Eur. J. Plant Pathol. 105:327-332.
33
Lee, K.A., H.J. Lee, Y.S. Park, W.K. Choi, N.H. Hur, J.H. Lee, S.G. Yang, C.H. Harn, and S.H. Nahm. 2006. Molecular markers linked to downy mildew resistance locus in Chinese cabbage. J. Plant Biotechnol. 33(1s):24-24.
34
Lee, S.H., S.C. Lee, D.H. Byun, D.Y. Lee, J.Y. Park, J.H. Lee, H.O. Lee, S.H. Sung, and T.J. Yang. 2014. Association of molecular markers derived from the BrCRISTO1 gene with prolycopene-enriched orange-colored leaves in Brassica rapa. Theor. Appl. Genet. 127:179-191.
35
Li, H., S.C. Yu, F.L. Zhang, Y.J. Yu, X.Y. Zhao, D.S. Zhang, and X. Zhao. 2011. Development of molecular markers linked to the resistant QTL for downy mildew in Brassica rapa L. ssp. pekinensis. Yi Chuan 33:1271-1278.
36
Li, X., N. Ramchiary, S.R. Choi, V.D. Nguyen, M.J. Hossain, H.K. Yang, and Y.P. Lim. 2010. Development of a high density integrated reference genetic linkage map for the multinational Brassica rapa Genome Sequencing Project. Genome 53:939-947.
37
Li, X., N. Ramchiary, V. Dhandapani, S.R. Choi, Y.K. Hur, I.S. Nou, M.K. Yoon, and Y.P. Lim. 2013. Quantitative trait loci mapping in Brassica rapa revealed the structural and functional conservation of genetic loci governing morphological and yield component traits in the A, B, and C subgenomes of Brassica species. DNA Res. 20:1-16.
38
Lou, P., J.J. Zhao, H.J. He, C. Hanhart, D.P.D. Carpio, R. Verkerk, J. Custers, M. Koornneef, and G. Bonnema. 2008. Quantitative trait loci for glucosinolate accumulation in Brassica rapa leaves. New Phytologist 179:1017-1032.
39
Makaroff, C.A. and J.D. Palmer. 1988. Mitochondrial DNA rearrangements and transcriptional alterations in the male-sterile cytoplasm of Ogura radish. Mol. Cell. Biol. 8:1474-1480.
40
Matsumoto, E., H. Ueno, D. Aruga, K. Sakamoto, and N. Hayashida. 2012. Accumulation of three clubroot resistance genes through marker-assisted selection in Chinese cabbage (Brassica rapa ssp. pekinensis). J. Jpn. Soc. Hort. Sci. 81:184-190.
41
Matsumoto, E., N. Hayashida, L. Sakamoto, and M. Ohi. 2005. Behavior of DNA markers linked to a clubroot resistance gene in segregating populations of Chinese cabbage (Brassica rapa ssp. pekinensis). J. Jpn. Soc. Hort. Sci. 74:367-373.
42
Matsumoto, E., C. Yasui, M. Ohi, and M. Tsukada. 1998. Linkage analysis of RFLP markers for clubroot resistance and pigmentation in Chinese cabbage (Brassica rapa ssp. pekinensis). Euphytica 104:79-86.
43
Muangprom, A. and T.C. Osborn. 2004. Characterization of a dwarf gene in Brassica rapa, including the identification of a candidate gene. Theor. Appl. Genet. 108:1378-1384.
44
Ofori, A., H.C. Becker, and F.J. Kopisch-Obuch. 2008. Effect of crop improvement on genetic diversity in oilseed Brassica rapa (turnip-rape) cultivars, detected by SSR markers. J. Appl. Genet. 49:207-212.
45
Piao, Z.Y., Y.Q. Deng, Y.J. Park, Y.S. Choi, and Y.P. Lim. 2004. SCAR and CAPS mapping of a resistance gene, CRb, that confers resistance to Plasmodiophora brassicae in Chinese cabbage (Brassica rapa ssp. pekinensis). Theor. Appl. Genet. 108:1458-1465.
46
Ramchiary, N., V.D. Nguyen, X. Li, C.P. Hong, V. Dhandapani, S.R. Choi, G. Yu, Z.Y. Piao, and Y.P. Lim. 2011. Genic micro-satellite markers in Brassica rapa: Development, characterization, mapping, and their utility in other cultivated and wild Brassica relatives. DNA Res. 18:305-320.
47
Ramchiary, N., K.L. Padmaja, S. Sharma, V. Gupta, Y.S. Sodhi, A. Mukhopadhyay, N. Arumugam, D. Pental, and A.K. Pradhan. 2007. Mapping of yield influencing QTL in Brassica juncea: Implications for breeding of a major oilseed crop of dryland areas. Theor. Appl. Genet. 115:807-817.
48
Rusholme, R.L., E.E. Higgins, J.A. Walsh, and D.J. Lydiate. 2007. Genetic control of broad-spectrum resistance to turnip mosaic virus in Brassica rapa (Chinese cabbage). J. Gen. Virol. 88:3177-3186.
49
Saito, M., N. Kubo, S. Matsumoto, K. Suwabe, M. Tsukada, and M. Hirai. 2006. Fine mapping of the clubroot resistance gene, Crr3, in Brassica rapa. Theor. Appl. Genet. 114:81-91.
50
Sakamoto, K., A. Saito, N. Hayashida, G. Taguchi, and E. Matsumoto. 2008. Mapping of isolate-specific QTLs for clubroot resistance in Chinese cabbage (Brassica rapa L. ssp. pekinensis). Theor. Appl. Genet. 117:759-767.
51
Song, K.M., T.C. Osborn, and P.H. Wilfiams. 1988a. Brassica taxonomy based on nuclear restriction fragment length poly-morphisms (RFLPs). Theor. Appl. Genet. 76:593-600.
52
Song, K.M., J.Y. Suzuki, M.K. Slocum, P.H. Williams, and T.C. Osborn. 1988b. A linkage map of Brassica rapa (syn. campestris) based on restriction fragment length polymorphism loci. Theor. Appl. Genet. 82:296-304.
53
Statistics Korea. 2013. Crop production statistics for 2012. Statistics Korea, Social Statistics Bureau, Agriculture and Fisheries Statistics Division, Daejeon, Korea. p. 22-23.
54
Suwabe, K., H. Tsukazaki, H. Iketani, K. Hatakeyama, M. Fujimura, T. Nunome, H. Fukuoka, S. Matsumoto, and M. Hirai. 2003. Identification of two loci for resistance to clubroot (Plasmodiophora brassicae Woronin) in Brassica rapa L. Theor. Appl. Genet. 107:997-1002.
55
Suwabe, K., H. Tsukazaki, H. Iketani, K. Hatakeyama, M. Kondo, M. Fujimura, T. Nunome, H. Fukuoka, M. Hirai, and S. Matsumoto. 2006. Simple sequence repeat-based comparative genomics between Brassica rapa and Arabidopsis thaliana: The genetic origin of clubroot resistance. Genetics 173:309-319.
56
Tanhuanpää, P.K., J.P. Vilkki, and H.J. Vilkki. 1995. Identification of a RAPD marker for palmitic-acid concentration in the seed oil of spring turnip rape (Brassica rapa ssp. oleifera). Theor. Appl. Genet. 91:477-480.
57
The Brassica rapa Genome Sequencing Project Consortium. 2011. The genome of the mesopolyploid crop species Brassica rapa. Nat. Genet. 43:1035-1039.
58
Ueno, H., E. Matsumoto, D. Aruga, S. Kitagawa, H. Matsumura, and N. Hayashida. 2012. Molecular characterization of the CRa gene conferring clubroot resistance in Brassica rapa. Plant Mol. Biol. 80:621-629.
59
Verma, J.K., Y.S. Sodhi, A. Mukhopadhyay, N. Arumugam, V. Gupta, D. Pental, and A.K. Pradhan. 2000. Identification of stable maintainer and fertility restorer lines for ‘Polima’ CMS in Brassica campestris. Plant Breeding 119:90-92.
60
Voorrips, R.E. 1995. Plasmodiophora brassicae: Aspects of pathogenesis and resistance in Brassica oleracea. Euphytica 83:139-146.
61
Wang, J., D.J. Lydiate, I.A. Parkin, C. Falentin, R. Delourme, P.W. Carion, and G.J. King. 2011. Integration of linkage maps for the Amphidiploid Brassica napus and comparative mapping with Arabidopsis and Brassica rapa. BMC Genomics 12:101.
62
Wang, X., H. Chen, Y. Zhu, and R. Hou. 2009. An AFLP marker linked to turnip mosaic virus resistance gene in pak-choi. African J. Biotechnol. 8:2508-2512.
63
Yang, J., X. Liu, X. Yang, and M. Zhang. 2007. Mitochondrially- targeted expression of a cytoplasmic male sterility-associated orf220 gene causes male sterility in Brassica juncea. BMC Plant Biol. 10:231-241.
64
Yang, Y.W., P.Y. Tai, Y. Chen, and W.H. Li. 2002. A study of the phylogeny of Brassica rapa, B. nigra, Raphanus sativus, and their related genera using noncoding regions of chloroplast DNA. Mol. Phylogenet. Evol. 23:268-275.
65
Ying, M., F. Dreyer, D. Cai, and C. Jung. 2003. Molecular markers for genic male sterility in Chinese cabbage. Euphytica 132:227-234.
66
Yu, H.F., X.M. Zhong, B.Y. Li, and H.H. Gu. 2010. A Molecular marker linked to downy mildew resistant gene in heading Chinese cabbage (Brassica rapa L. ssp. Pekinensis (Lour) Olsson). Chinese Agricultural Sci. Bul. 26(15):66-70.
67
Yu, S., F. Zhang, R. Yu, Y. Zou, J. Qi, X. Zhao, Y. Yu, D. Zhang, and L. Li. 2009. Genetic mapping and localization of a major QTL for seedling resistance to downy mildew in Chinese cabbage (Brassica rapa ssp. pekinensis). Mol. Breeding 23:573-590.
68
Yu, S., F. Zhang, X. Zhao, Y. Yu, and D. Zhang. 2011. Sequence-characterized amplified region and simple sequence repeat markers for identifying the major quantitative trait locus responsible for seedling resistance to downy mildew in Chinese cabbage (Brassica rapa ssp. pekinensis). Plant Breeding 130: 580-583.
69
Yuan, Y.X., R.F. Sun, X.W. Zhang, J. Wu, D.H. Xu, H. Zhang, J.M. He, Y.G. Zhang, Y.G. Hang, and X.W. Wang. 2008. A CAPS marker linked to bolting related gene BrFLC1 in Brassica rapa. Acta Hort. Sinica 35:1635-1640.
70
Zhao, J., V. Kulkarni, N. Liu, D.P.D. Carpio, J. Bucher, and G. Bonnema. 2010. BrFLC2 (FLOWERING LOCUS C) as a candidate gene for a vernalization response QTL in Brassica rapa. J. Expt. Bot. 61:1817-1825.
71
Zhang, J., Y. Lu, Y. Yuan, X. Zhang, J. Geng, Y. Chen, S. Cloutier, P.B.E. McVetty, and G. Li. 2009. Map-based cloning and characterization of a gene controlling hairiness and seed coat color traits in Brassica rapa. Plant Mol. Biol. 69:553-563.
72
Zhao, J., X. Wang, B. Deng, P. Lou, J. Wu, R. Sun, Z. Xu, J. Vromans, M. Koornneef, and G. Bonnema. 2005. Genetic relationships within Brassica rapa as inferred from AFLP fingerprints. Theor. Appl. Genet. 110:1301-1314.
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